1. Production of various organic acids from different renewable sources by immobilized cells in the regimes of separate hydrolysis and fermentation (SHF) and simultaneous saccharification and fermentation (SFF). / Maslova O.V., Stepanov N.A., Senko O.V. et al. // Bioresource Technology.2019.Vol. 272.P.1-9.

2. Evaluation of biocidal properties of vegetable oil-based corrosion inhibitors using bioluminescent enzymatic method. / Ismayilov I.T., Stepanov N.A., Efremenko E.N. et al. // Moscow University Chemistry Bulletin. 2015. Vol.70(4). P.197-201.

3. Complex effect of lignocellulosic biomass pretreatment with 1-butyl-3-methylimidazolium chloride ionic liquid on various aspects of ethanol and fumaric acid production by immobilized cells within SSF. / Dotsenko A.S., Dotsenko G.S., Senko O.V. et al. // Bioresource Technology. 2018. Vol.250. P.429-438.

4. Stepanov N., Efremenko E. Immobilised cells of Рachysolen tannophilus yeast for ethanol production from crude glycerol. // New Biotechnology. 2017. Vol.34. P.54-58.

5. Ефременко Е.Н., Татаринова Н.Ю. Влияние длительного хранения клеток микроорганизмов, иммобилизованных в криогель поливинилового спирта, на их выживаемость и биосинтез целевых метаболитов. // Микробиология. 2007. Vol.76(3). P.383-389.

6. A simple and highly effective catalytic nanozyme scavenger for organophosphorus neurotoxins. / Efremenko E.N., Lyagin I.V., Klyachko N.L. et al. // Journal of Controlled Release. 2017. Vol. 247, P. 175-181.

7. Stepanov N., Efremenko E. «Deceived» concentrated immobilized cells as biocatalyst for intensive bacterial cellulose production from various sources. Catalysts. 2018. Vol. 8(1). 33. https://doi.org/10.3390/catal8010033.

8. Методы иммобилизации микроорганизмов для динамических атомно-силовых исследований (обзор). / Куюкина М. С., Коршунова И.О., Рубцова Е. В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2014. Т.50(1). С.7-16.

9. Sapropel-based supports as novel macroporous carbon-mineral adsorbents for enzymatic active substances. / Kovalenko G.A., Perminova L.V., Rudina N.A., et al. // Resource-Efficient Technologies. 2016. Vol.2. P.159-167.

10. Tuning surface morphology of inorganic supports for adsorptive immobilization of enzymatic active substances. / Kovalenko G.A., Perminova L.V., Chuenko T.V., et al. // Composite Interfaces. 2009. Vol.16. P.293-305.

11. Adsorptive immobilization of enzymatic active substances on ceramic foam coated by carbon nanofibers. / Kovalenko G.A., Perminova L.V., Chuenko T.V., et al. // Carbon. 2009.Vol.47(2).P.420-427.

12. Heterogeneous biocatalysts prepared by immuring enzymatic active components inside ailica xerogel and nanocarbons-in-silica composites. / Kovalenko G.A., Perminova L.V., Beklemishev A.B., et al. // Catalysts.2018. Vol.8(5).177, https://doi.org/10.3390/catal8050177.

13. Иммобилизация рекомбинантного штамма-продуцента глюкозоизомеразы в ксерогеле диоксида кремния и свойства приготовленных биокатализаторов. / Коваленко Г.А., Перминова Л.В., Чуенко Т.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2011. Vol.47(2). P.168-175.

14. Коваленко Г.А., Перминова Л.В., Сапунова Л.И. Гетерогенные биокатализаторы для получения сахаристых крахмалопродуктов - паток и сиропов различного углеводного состава. // Катализ в промышленности. 2010. T.2. C.60-66.

15. Immobilization of enzymatic active substances by immuring inside nanocarbon-in-silica composites. / Kovalenko G.A., Perminova L.V., Rudina N.A., et al. // Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. 2012. Vol.76(1). P.116-124.

16. Иммобилизация клеток бактериального штамма-продуцента глюкозоизомеразы в композитные углерод-силикатные матрицы. / Сапунова Л.И., Коваленко Г.А., Лобанок А.Г. и др. // Доклады НАН Беларуси.2012. T.56(1). C. 98-105.

17. Иммобилизация рекомбинантного штамма-продуцента термостабильной липазы из Thermomyces lanuginosus в наноуглерод-силикатные матрицы и свойства приготовленных биокатализаторов. / Коваленко Г.А., Беклемишев А.Б., Перминова Л.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2013. Т.49(3). С.301-311.

18. Immobilization of recombinant E.сoli strain-producer of thermostable lipase by entrapment inside silica xerogel and nanocarbon-in-silica composites. / Kovalenko G.A., Beklemishev A.B., Perminova L.V., et al. // Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. 2013. Vol.98(1). P.78-86.

19. Исследование физико-химических свойств биокатализаторов с активностью термостабильной липазы и конечных продуктов переэтерификации триглицеридов. / Коваленко Г.А., Перминова Л.В., Беклемишев А.Б. и др. // Биотехнология. 2013.Т.6. С. 35-50.

20. Биокаталитические гетерогенные процессы переэтерификации растительных масел в биодизель. / Коваленко Г.А., Перминова Л.В., Беклемишев А.Б. и др. // Катализ в промышленности. 2014. Т.6. С.71-79.

21. Биокатализаторы с активностью термостабильной липазы для процессов биоконверсии триглицеридов растительных масел: приготовление и свойства. / Коваленко Г.А., Перминова Л.В., Беклемишев А.Б., и др. // Известия ВУЗов. Серия Прикладная химия и биотехнология. 2015. Т.2(13). С. 65-76.

22. Каталитические свойства липазы, включенной в наноуглерод-силикатные матрицы в виде лизатов штамма-продуцента rEscherichia сoli/lip, в реакциях биоконверсии триглицеридов и жирных кислот. / Коваленко Г.А., Перминова Л.В., Беклемишев А.Б., и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2018. Т.54(1). С. 46-54.

23. Биокаталитические гетерогенные процессы этерификации насыщенных жирных кислот с алифатическими спиртами. / Коваленко Г.А., Перминова Л.В., Беклемишев А.Б. и др. // Катализ в промышленности. 2017. Т.17(5). С. 399-406.

24. Адсорбционная иммобилизация клеток родококков в гидрофобиизированных производных широкопористого полиакриламидного криогеля / Куюкина М.С., Ившина И.Б., Рубцова Е.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2011. Т.47(2). С.176-182.

25. Survival of cryogel-immobilized Rhodococcus strains in crude oil-contaminated soil and their impact on biodegradation efficiency. / Kuyukina M.S., Ivshina I.B., Kamenskikh T.N., et al. // International Biodeterioration and Biodegradation. 2013. Vol.84, P.118-125.

26. Immobilized fungal biocatalysts for the production of cellulase complex hydrolyzing renewable plant feedstock. / Efremenko E. N., Stepanov N. A., Gudkov D. A., et al. // Catalysis in Industry. 2013. N.5(2). P.190-198.

27. New biocatalyst with multiple enzymatic activities for treatment of complex food wastewater. / Efremenko E., Senko O., Zubaerova D. et al. // Food Technology and Biotechnology. 2008. Vol.46(2). P.208-212.

28. Получение метана в процессе биотрансформации иммобилизованных клеток мицелиального гриба Rhizopus oryzae, использованных для получения молочной кислоты. / Мамедова Ф.Т., Сенько О.В., Маслова О.В., и др. // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии имени Ю.А. Овчинникова. 2015. Т.11(1). С. 28-33.

29. Ресурсосберегающая биотехнология получения фумаровой кислоты из возобновляемого растительного сырья. / Сенько О.В., Степанов, Н.А., Маслова, О.В. и др. // Вестник Кузбасского Государственного Технического Университета. 2013. Т.1. С.111-113.

30. Biocatalysts based on immobilized cells of microorganisms in the production of bioethanol and biobutanol. / Efremenko E.N., Stepanov N.A., Nikolskaya A.B. et al. // Catalysis in Industry. T.3. P. 41-46.

31. Культура растительных клеток и тканей: технология получения, разнообразие фармакологически активных метаболитов и приемы регуляции их синтеза. / Юрин В.М., Молчан О.В., Шапчиц М.П. и др. // Труды БГУ. Физиологические, биохимические и молекулярные основы функционирования биосистем. 2009. Т.4(2). С.168-182.

32. Синтез биологически активных соединений иммобилизованными клетками лекарственных растений. / Юрин В.М., Дитченко Т.И., Молчан О.В. и др. // Труды БГУ. Физиологические, биохимические и молекулярные основы функционирования биосистем. 2013. Т. 8(1). С. 86-95.

33. Иммобилизация - эффективный прием повышения синтеза биологически активных веществ в суспензионной культуре растительных клеток. / Юрин В. М., Ромашко С. Н., Молчан О. В. и др. // Труды БГУ Физиологические, биохимические и молекулярные основы функционирования биосистем. 2010. Т.3(1). С.191-199.

34. Юрин В. М. Физиолого-биохимические закономерности функционирования иммобилизованных растительных клеток. // Труды БГУ. Физиологические, биохимические и молекулярные основы функционирования биосистем. 2012. Т.7(1). С.84-98.

35. Polylactide-based microspheres prepared using solid-state copolymerized chitosan and D, L-lactide. / Demina T.S., Akopova T.A., Vladimirov L.V. et al. // Materials Science and Engineering: C. 2016. Vol. 59. P.333-338.

36. DC discharge plasma modification of chitosan films: an effect of chitosan chemical structure. / Demina T.S., Drozdova M.G., Yablokov M.Y. et al. // Plasma Processes Polymers. 2015. Vol.12(8). P. 710-718.

37. Macroporous hydrogels based on chitosan derivatives: Preparation, characterization and in vitro evaluation. / Demina T.S., Zaytseva-Zotova D.S., Akopova T.A., et al. (2017). // Journal of Applied Polymer Science. 2017. Vol.134., 44651. https://doi.org/10.1002/app.44651.

38. Biodegradable scaffolds based on chitosan: Preparation, properties, and use for the cultivation of animal cells. / Kildeeva N. R., Kasatkina M. A., Drozdova M. G., et al. // Applied Biochemestry and Microbiology. 2016. Vol.52(5). P.515-524.

39. Macroporous modified poly (vinyl alcohol) hydrogels with charged groups for tissue engineering: preparation and in vitro evaluation. / Drozdova M.G., Zaytseva-Zotova D.S., Akasov R.A. et al. // Materials Science and Engineering: C. 2017. Vol.75. P.1075-1082.

40. Structure and properties of chitosan-containing nanofibers. / Sonina A.N., Vikhoreva G.A., Veleshko I.E., et al. // Fibre Chemistry. 2013. Vol.45(2). P.79-84.

41. Biodegradable polyester-based microcarriers with modified surface tailored for tissue engineering. / Privalova A., Markvicheva E., Sevrin C. et al. // Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2015. Vol.103(3). P.939-948.

42. Биодеградируемые матриксы на основе хитозана: получение, свойства, использование для культивирования животных клеток. / Кильдеева Н.Р., Касаткина М.А., Дроздова М.Г. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2016. Т.52(5). С.504-512.

43. Mediator-free bioelectrocatalytic oxidation of ethanol on an electrode from thermally expanded graphite modified by Gluconobacter oxydans membrane fractions. / Reshetilov A.N., Kitova A.E., Kolesov V.V. et al. // Electroanalysis. 2015. Vol.27(6). P.1443-1448.

44. Конверторное накопление электрической энергии, генерируемой биотопливным элементом микроваттной мощности. / Решетилов А.Н., Китова А.Е., Ивахненко А.А. et al. // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. 2014. Vol.10(3). P.27-32.

45. Аэробные метилобактерии как основа биосенсора для детекции дихлорметана. / Плеханова Ю.В., Фирсова Ю.Е, Доронина Н.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2013. Т. 49(2),. С.203-209.

46. Деградация ЭДТА и его комплексов с металлами иммобилизованными клетками бактерий Chelativorans oligotrophicus LPM"4. / Кувичкина Т.Н., Капаруллина Е.Н., Доронина Н.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2012. Т.48(6). С.626-630.

47. Voronova E.A., Iliasov P.V., Reshetilov A.N. Development, investigation of parameters and estimation of possibility of adaptation of Pichia angusta based microbial sensor for ethanol detection. // Analytical Letters. 2008. Vol. 41. P.377-391.

48. Электрохимический сенсор на основе алкогольоксидазы для экспресс-определения содержания низших спиртов. / Алферов В.А., Зайцев М.Г., Понаморева О.Н. и др. // Журнал аналитической химии. 2011. Т.66(12). С.1322-1328.

49. Характеристика рецепторных элементов биосенсоров при двух способах иммобилизации метилотрофных дрожжей. / Зайцев М.Г., Арляпов В.А., Алфёров В.А. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2012. Т.48(5). С. 570-575.

50. Determination of ethanol in acetic acid-containing samples by a biosensor based on immobilized Gluconobacter cells. / Reshetilov A.N., Kitova A.E., Arkhipova A.V. et al. // Nusantara Bioscience. 2012. Vol.4. P.97-100.

51. Кувичкина Т.Н., Ермакова И.Т., Решетилов А.Н. Штамм Alcaligenes xylosoxydans subsp. denitrificans td2 как основа биосенсора для определения тиодигликоля. // Микробиология. 2012. Т.81(6). С. 810-811.

52. Кувичкина Т.Н., Капаруллина Е.Н., Решетилов А.Н. Окисление метиламина иммобилизованными метилобактериями Methylopila musalis ВКМ B-2646 // Евразийский союз учёных (ЕСУ). 2015. Ч.7.№5(14). С.21-23.

53. Оценка свойств биоэлектродов на основе углеродных высокодисперсных материалов, содержащих микроорганизмы Gluconobacter. / Решетилов А.Н., Плеханова Ю.В., Тарасов С.Е. и др. // Российские нанотехнологии. 2017. Т.12(1-2). С.83-89.

54. Анод микробного биотопливного элемента на основе терморасширенного графита. / Китова А.Е., Самойлова А.С., Мачулин А.В. и др. // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. 2014. Т.10(1). С.25-28.

55. Генерация потенциала биотопливным элементом при использовании внутриполостной жидкости травяной лягушки Rana temporaria в качестве электролита. / Решетилов А.Н., Китова А.Е., Утешев В.К. и др. // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. 2014. Т.10.(3). С.12-16.

56. Живая батарея - микробный биотопливный элемент, функционирующий в организме травяной лягушки Rana temporaria. / Решетилов А.Н., Плеханова Ю.В., Тарасов С.Е. и др. // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. 2015. Т.11(2). С.5-10.

57. Биолюминесцентный мониторинг экотоксикантов (экологическая люминометрия). / Куц В.В., Аленина К.А., Сенько О.В. и др. // Вода: химия и экология. 2011. №10. С.47-53.

58. Biosensors based on the luminous bacteria Photobaterium phosphoreum immobilized in polyvinyl alcohol cryogel for the monitoring of ecotoxicants ./ Efremenko E.N., Senko O.V., Aleskerova L.E. et al. // Appllied Biochemestry and Microbiology.2014. Vol.50(5). P.477-482.

59. Biosensitive element in the form of immobilized luminescent photobacteria for detecting ecotoxicants in aqueous flow-through systems. / Efremenko E.N., Maslova O.V., Kholstov A.V. et al. // Luminescence. 2016. Vol.31(6). P.1283-1289.

60. Ismailov A.D., Kutz V.V., Efremenko E.N. Factors affecting the stability of a light emission at PVA-immobilized cells of Photobacterium phosphoreum. // Luminescence. 2010. Vol.25(2). P.166-167.

61. Гидроксилирование стероидов мицелием Curvularia lunata в присутствии метил-β-циклодекстрина. / Андрюшина В.А., Дружинина А.В., Ядерец В.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2011. Т.47(1). С.50-57.

62. Гидроксилирование стероидов мицелием Curvularia lunatа в присутствии метил-β-циклодекстрина. / Андрюшина В.А., Дружинина А.В., Ядерец В.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2011. Т.47(1). С.42-48.

63. Новый иммобилизованный биокатализатор для микробиологического синтеза фармацевтических стероидов. / Андрюшина В.А., Карпова Н.В., Дружинина А.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2015.Т.51(5). С.1-10.

64. Senko O.V., Efremenko E.N. Highly concentrated populations of Aureobasidium pullulans cells in the biocatalytic processes of pullulan production. // Catalysis in Industry. 2017. N.9. P.344-348.

65. Stepanov N.A., Senko O.V., Efremenko E.N. Biocatalytic production of extracellular exopolysaccharide dextran synthesized by cells of Leuconostoc mesenteroides. // Catalysis in Industry. 2017. N.9. P.339-343.

66. Степанов Н.А., Ефременко Е.Н. Биокаталитическое получение альгината, продуцируемого клетками Azotobacter vinelandii в иммобилизованной форме. // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии имени Ю.А. Овчинникова. 2017. T.13. C.25-30.

67. Трансформация 2- и 4-цианопиридинов свободными и иммобилизованными клетками нитрилгидролизующих бактерий. / Максимова Ю.Г., Васильев Д.М., Овечкина Г.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2013. Т.49(4). С.358-363.

68. Васильев Д.М., Максимова Ю.Г., Демаков В.А. Динамика трансформации 3-цианопиридина иммобилизованными и свободными клетками Rhodococcus ruber GT1. // Вестник Уральской медицинской академической науки. 2011. №4/1(38). С.191-192.

69. Биокаталитическая трансформация 3-цианопиридина иммобилизованными и суспендированными клетками нитрилутилизирующих бактерий. / Максимова Ю.Г., Васильев Д.М., Овечкина Г.В. и др. // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. 2012. Т.8(2). С.54-58.

70. Гетерогенный биокатализатор на основе клеток нитрилгидролизующих бактерий и многослойных углеродных нанотрубок для трансформации нитрилов и амидов. / Максимова Ю.Г., Никулин С.М., Осовецкий Б.М. // Прикладная биохимия и микробиология. 2017. Т.53(5). Р.462-469.

71. Трансформация амидов адгезированными клетками родококков, обладающими амидазной активностью. / Максимова Ю.Г., Горбунова А.Н., Зорина А.С. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2015. Т.51(1). С.53-58.

72. Максимова Ю.Г., Горбунова А.Н., Демаков В.А. Стереоселективная биотрансформация фенилглициннитрила гетерогенным биокатализатором на основе иммобилизованных бактериальных клеток и ферментного препарата. // Доклады академии наук. 2017. №474(2). С.248-250.

73. Максимова Ю.Г., Максимов А.Ю., Демаков В.А. Биопленки нитрилгидролизующих бактерий: динамика роста, устойчивость к токсичным веществам и биотехнологический потенциал. // Биотехнология. 2015. Т.4. С.39-51.

74. Ившина И.Б. Состояние и проблемы развития специализированных центров микробиологических ресурсов в России. // Микробиология. 2012. Т.81(5). С.551-560.

75. Рубцова Е. В., Куюкина М. С., Ившина И. Б. Влияние условий культивирования на адгезивную активность родококков в отношении н-гексадекана. // Прикладная биохимия и микробиология. 2012. Т.48(5). С.501-509.

76. Влияние физико-химических свойств актинобактерий рода Rhodococcus на их адгезию к полистиролу и н-гексадекану. / Рубцова Е.В., Криворучко А.В., Яруллина Д.Р. и др. // Фундаментальные исследования. 2013. Т.4(4). С.900-904.

77. Адсорбционная иммобилизация клеток родококков в гидрофобизованных производных широкопористого полиакриламидного криогеля. / Куюкина М.С., Ившина И.Б., Рубцова Е.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2011. Т.47(2). С.176-182.

78. Экспериментальное и теоретическое исследование процесса иммобилизации актинобактерий в колоночном биореакторе с псевдоожиженным слоем. / Куюкина М.С., Ившина И.Б., Серебренникова М.К. и др. // Российский журнал биомеханики. 2012. №164(58). Р.83-91.

79. Oilfield wastewater biotreatment in a fluidized-bed bioreactor using co-immobilized Rhodococcus cultures. / Kuyukina M.S., Ivshina I.B., Serebrennikova M.K. et al. // Journal of Environmental Chemical Engineering. 2017. Vol.5. P.1252-1260.

80. Влияние органических растворителей на жизнеспособность и морфофункциональные свойства родококков. / Коршунова И.О., Писцова О.Н., Куюкина М.С. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2016. Т.52(1). С.53-61.

81. Адаптация коиммобилизованных родококков к нефтяным углеводородам в колоночном биореакторе. / Серебренникова М.К., Куюкина М.С., Криворучко А.В. и др. // Прикладная биохимия и микробиология. 2014. Т.50(3). С.295-303.

82. Биоремедиация нарушенных углеводородами и тяжелыми металлами почв с использованием Rhodococcus-биосурфактантов и иммобилизованных родококков. / Ившина И.Б., Криворучко А.В., Куюкина М.С. и др. // Аграрный вестник Урала. 2012. №100(8). С.65-68.

83. Production of biofuels from pretreated microalgae biomass by anaerobic fermentation with immobilized Clostridium acetobutylicum cells. / Efremenko E. N., Nikolskaya A. B., Lyagin I. V. et al // Bioresourse Technology. 2012. Vol.114. P.342-348.

84. Senko O., Maslova O., Efremenko E. Optimization of the use of His6-OPH-based enzymatic biocatalysts for the destruction of chlorpyrifos in soil. // International Journal of Environmental Research and Public Health. 2017. Vol.14(12). P.1438-1452.

85. Комбинированное применение ферментного и бактериального биокатализаторов в процессах биодеструкции ФОВ и продуктов их разложения. / Ефременко Е.Н., Лягин И.В., Гудков Д.А. и др. // Теоретическая и прикладная экология. 2015. №3. С.35-39.

86. Направления использования биотехнологических способов при ликвидации последствий работы объектов по уничтожению химического оружия. / Янковская А.А., Филимонов И.В., Завьялова Н.В. и др. // Теоретическая и прикладная экология. 2017. №4. С.66-73.

87. Основные технологические операции и стадии биоремедиации почв и очистки вод in situ. / Завьялова Н.В., Филимонов И.В., Ковтун В.А. и др. // Теоретическая и прикладная экология. 2014. №4. С. 34-41.

88. Биокатализаторы на основе штаммов микроорганизмов и ферментов, обладающих повышенной способностью к разложению отравляющих веществ и продуктов их деструкции, в процессе очистки почв и вод. / Завьялова Н.В., Филимонов И.В., Ефременко Е.Н. и др. // Теоретическая и прикладная экология, 2014. №4. С. 42-50.

89. Lyagin I.V., Andrianova M.S., Efremenko E.N. Extensive hydrolysis of phosphonates as unexpected behaviour of the known His6-organophosphorus hydrolase. // Appllied Microbiology and Biotechnology.2016. Vol.100(13). P.5829-5838.

90. Разрыв С-Р связи в фосфонатах под действием ферментных биокатализаторов. / Ефременко Е.Н., Завьялов В.В., Завьялова Н.В. и др. // Теоретическая и прикладная экология. 2015. № 3. С.47-53.

91. Иммобилизованные гетерогенные биокатализаторы для разложения С-Р-связи в продуктах уничтожения фосфорорганических отравляющих веществ. / Ефременко Е.Н., Лягин И.В., Сенько О.В. и др. // Вестник РУДН. Серия: Экология и безопасность жизнедеятельности. 2011. №1. С.61-66.

92. Sirotkina M., Lyagin I., Efremenko E. Hydrolysis of organophosphorous pesticides in soil: new opportunities with ecocompatible immobilized His6-OPH. // International Biodeterioration and Biodegradation. 2012. Vol.68. P.18-23.

93. Биотехнологические методы и нейтрализующие средства для обеззараживания почв и очищения вод, загрязненных экотоксикантами. / Завьялова Н.В., Филимонов И.В., Ефременко Е.Н. и др.// Теоретическая и прикладная экология. 2014. № 4. С.26-33.

94. Lactic acid production using free cells of bacteria and filamentous fungi and cells immobilized in polyvinyl alcohol cryogel: A comparative analysis of the characteristics of biocatalysts and processes. / Maslova O.V., Senko O.V., Stepanov N.A. et al.// Catalysis in Industry. 2016. Vol.8(3). P.280-285.